ПРАВИЛА

Продолжение

8.2.12. При вскрытии павших лабораторных животных необходимо соблюдать
правила безопасности.
Павших мышей берут корнцангами, вскрывают их на пробковой доске пло-
щадью не менее 18 см2, покрытой несколькими слоями марли, смоченной 5%-ным
раствором хлорамина, или в чашках Петри.
Для извлечения мозга мышей фиксируют на пробковой доске булавками спи-
ной вверх. Шерсть в области головы протирают 5 %-ным раствором хлорамина,
снимают кожу с головы и после этого делают разрез черепа острыми глазными нож-
ницами .
Растирание и эмульгирование органов и тканей, содержащих вирус, проводят
в ступке с глухим чехлом из 4 слоев марли или в банке с бусами и притертой проб-
кой, обернутой чехлом из 4 слоев марле, пропитанной 5 %-ным раствором хлор-
амина.
Вскрытых мышей кладут в бачок с дезраствором. Пробковую доску и марлю
по окончании работы погружают в 5 %-ный раствор хлорамина на 2 часа.
Инструменты для вскрытия стерилизуют кипячением; непосредственно перед
применением их обжигают над пламенем спиртовки, в течение работы с одной и
той же мышью периодически обеззараживают 5 %-ным раствором хлорамина, после
чего погружают в спирт и обжигают.
Во время работы инструменты (пинцеты, ножницы, булавки и др.) следует
тотчас же после использования профламбировать, а закончив работу, обеззара-
зить кипячением. После окончания работы все предметы помещают на 24 часа
в бак с 5%-ным раствором хлорамина для окончательного обеззаражива-
ния.
8.2.13. Предметы, которые выносят из бокса, в том числе и клетки с мышами,
предварительно протирают снаружи марлей или другой материей, обильно смочен-
ной 5 %-ным раствором хлорамина. Марлю (материю) после употребления погружают
в сосуд с таким же раствором. Выносить загрязненную посуду без предваритель-
ного ее обеззараживания за пределы помещения запрещается.
8.2.14. При проведении работ с вирусом бешенства врач должен иметь помощ-
ника (лаборанта), которого допускают к работе только при условии приобретения
им практического навыка и сдачи специального испытания (теоретические сведе-
ния по технике безопасности и освоение методик заражения и вскрытия мышей,
приготовление взвесей мозга, разведений и др.).
8.2.15. 0 каждом зараженном животном на основании экспертизы должны быть
сделаны записи в протоколе (в экспертизе) о том, убито оно или погибло, и на ка-
кой день; записи о каждом органе, взятом от зараженного животного, в чем и где
хранится, уничтожен и пр.
8.2.16. Зараженных мышей содержат в стеклянных банках, поставленных
в металлические клетки, которые размещают в специальной комнате отдела, непро-
ницаемой для грызунов. Эту комнату запирают и пломбируют. Допускается раз-
мещение зараженных животных в изолированном отделении вивария для заражен-
ных животных, которое также пломбируют.
Запрещается устанавливать клетки ниже чем на 0,5 м над полом и загромож-
дать ими комнату.
8.2.17. В комнатах, где размещены животные, зараженные вирусным материа-
лом, рекомендуется проводить не реже одного раза в день влажную уборку с 5 %-ным
раствором хлорамина.
Чистку клеток и банок, в которых содержатся подопытные животные, зара-
женные вирусным материалом, проводят обязательно в резиновых перчатках. Их
в процессе работы после очистки каждых 3-5 клеток (банок) обеззараживают по-
гружением, не снимая с рук, в 5 %-ный раствор хлорамина. По окончании работы
перчатки и руки дезинфицируют, затем перчатки кладут в раствор хлорамина. Банки,
в которых содержались подопытные животные, после очистки наполняют до краев
5 %-ным раствором хлорамина и оставляют на 12 часов. Наружные поверхности
банок дезинфицируют первый раз после удаления из них подопытных животных
и второй раз после выливания дезраствора.
8.2.18. Подопытных животных, зараженных вирусным материалом, учитывают
ежедневно в специальной тетради с указанием убывших (павших, уничтоженных).
Общее количество животных пересчитывают не реже одного раза в неделю. В слу-
чае недостачи животных составляют акт и представляют его заведующему отделом
(лабораторией), который обязан выяснить причину исчезновения зараженного жи-
вотного.
8.2.19. Зараженных вирусным материалом кроликов, морских свинок и крыс
содержат в железных клетках, размещенных на железных крашеных или оцинко-
ванных подносах. При уборке подносы дезинфицируют 5%-ным раствором карбо-
ловой кислоты.
8.2.20. Соблюдение правил обслуживания зараженных животных контролирует
ветеринарный врач.
8.2.21. Обеззараживание инфицированной посуды, трупов животных и мусора,
зараженных вирусным материалом, проводят с соблюдением особых мер предосто-
рожности.
Использованную посуду вместе с зараженным материалом помещают на месте
работы в баки с крышками и заливают 1-2 %-ным мыльным раствором. Затем баки
запирают на замок, пломбируют, регистрируют в особой тетради и автоклавируют.
Если по каким-либо причинам обеззараживаемая посуда не может быть подвергнута
автоклавированию, ее обрабатывают кипячением.
Трупы лабораторных животных сначала погружают в бачки с дезраствором,
а в конце рабочего дня специально выделенный сотрудник собирает их в общий
бак и сжигает. Если нет возможности сжечь трупы на месте, их вместе с бачками
автоклавируют.
В специальном журнале регистрируют общее количество уничтоженных живот-
ных.
Мусор из клеток после предварительного увлажнения раствором лизола соби-
рают в баки с крышками и вместе с баками обеззараживают в автоклаве, затем
мусор сжигают.

8.3. Серологический отдел (в подразделении серологической диагностики)

8.3.1. Материал, поступивший в отдел, до исследования хранят в холодиль-
нике. Нельзя оставлять его в коридоре или других местах, доступных для посто-
ронних лиц.
8.3.2. После уборки штативов с кровью столы и стеллажи протирают 5 %-ным
раствором карболовой кислоты или фламбируют при помощи зажженного факела.
Упаковочный материал сжигают или обеззараживают автоклавированием.
8.3.3. Не разрешается насасывать материал в пипетки ртом. Сыворотки раз-
ливают пипетками с помощью груши или индивидуальной пипеткой Флоринского.
Компоненты разливают аппаратом Флоринского, шприцем-автоматом или другими
приборами.
8.3.4. После окончания работы со столов убирают все лишнее, протирают их
5 %-ным раствором карболовой кислоты или фламбируют.
8.3.5. Отработанные пробы крови заливают на ночь 5 %-ным раствором фенола
или 4 %-ным раствором щелочи и на следующий день нагревают их до кипения.
8.3.6. Из дезраствора пробирки вынимают специальным черпаком и сразу же
погружают в раствор моющих средств. Работу с 5 % -ным раствором фенола и 4% -ным
раствором щелочи рекомендуется проводить в резиновых перчатках.
8.3.7. Растворы фенола и щелочи готовят в резиновых перчатках, защитных
очках, фартуке и нарукавниках.
8.3.8. После читки реакции пробирки заливают раствором моющих средств
и кипятят в течение 10-15 минут, затем их моют.
8.3.9. Ватные пробки от пробирок с кровью сжигают или собирают в баки и
стерилизуют автоклавированием.
8.3.10. Для доставки в лабораторию проб кожсырья используют тару, соответ-
ствующую по своим габаритам внутреннему объему автоклава. В этом случае пробы
сразу стерилизуют и пускают в работу.
8.3.11. Перекладывать пробы в автоклав или другую тару и автоклавировать
их разрешается с соблюдением следующих правил:
а) автоклавированне может проводить только специально проинструктирован-
ный лаборант;
б) при работе с неавтоклавированным сырьем необходимо надевать резиновые
сапоги, второй халат, резиновый фартук и перчатки;
в) по окончании работы резиновую спецодежду протирают раствором фенола,
халат автоклавируют, перчатки кипятят;
г) перекладывать неавтоклавированные пробы следует только на разостланной
клеенке, которую по окончании работы аккуратно складывают и стерилизуют в зато-
клаве;
д) тару, в которой доставлялись пробы, автоклавируют, а металлическую
посуду фламбируют факелом или паяльной лампой.
8.3.12. При исследовании на лептоспироз пересев штаммов проводят в боксе.
Отработанные при этом пипетки, пробирки и стекла погружают в 1 %-ный раствор
соляной кислоты до следующего дня и затем приступают к соответствующей обра-
ботке.

8.4. Отдел ветеринарно-санитарной экспертизы

8.4.1. При бактериологическом исследовании пищевых продуктов посевы на
питательные среды делают в помещении отдела. Не разрешается эту работу выпол-
нять во вскрывочных и в боксах, где работают с патологическим материалом.
8.4.2. При работе с живыми патогенными культурами и заразным патологиче-
ским материалом, при заражении животных, уходе за подопытными животными
н вскрытии их, а также при работе с ядовитыми, вредными, горючими и взрывча-
тыми веществами следует руководствоваться правилами, изложенными в соответ-
ствующих разделах.

8.5. Работа по диагностике микозов и проведение микотоксикологических
исследований, кормов

8.5.1. Работая с микозным материалом необходимо строго выполнять пра-
вила охраны труда и техники безопасности, установленные для работы по бактерио-
логической диагностике (см. п. 8.1).
8.5.2. Культуры грибов и зараженный ими материал следует автоклавировать
но возможности в день окончания их исследования.
8.5.3. Руки дезинфицируют З %-ным раствором формальдегида и моют как
можно чаще в течение рабочего дня и после окончания рабочего времени.
8.5.4. Для предотвращения заражения помещений лаборатории спорами гри-
бов необходимо все работы, связанные с микотоксикологическими исследованиями
кормов, проводить в боксе с соблюдением соответствующих правил предосторож-
ности (см. п. 7).
8.5.5. Образцы кормов, поступающие на исследование, хранят в металличе-
ском шкафу под замком.
8.5.6. Эфирные экстракты из образцов корма подготавливают в вытяжном
шкафу при включенной тяге, где проводят также их конденсацию. При этом запре-
щается пользоваться спичками и электроплитами с открытой спиралью.
8.5.7. Остатки неиспользованных образцов корма, из которого при исследова-
нии были выделены токсические грибы, тару из-под них, выделенную культуру
токсических грибов сжигают или обеззараживают автоклавированием.
8.5.8. Ежедневно в конце рабочего времени необходимо проводить тщатель-
ную влажную уборку помещения с применением 5 %-ного раствора хлорамина.

8.6. Паразитологический отдел

8.6.1. Штаммы патогенных культур (токсоплазмы), личинки гельминтов (финны,
трихинеллы и др.) и членистоногие должны быть на учете, зарегистрированы в спе-
циальном журнале, пронумерованном, прошнурованном, с печатью лаборатории
и подписью директора или его заместителя. В журнале указывают названия и свой-
ства культур, место и дату получения или выделения их, число пробирок и дату
уничтожения культуры после завершения лабораторного исследования.
8.6.2. Работу с заразным материалом проводят в боксе с соблюдением соот-
ветствующих правил (см. п. 7).
8.6.3. В случаях рассеивания заразного материала (токсоплазм и др.) немед-
ленно принимают меры к обеззараживанию места, где произошла авария.
8.6.4. При заражении лабораторных животных, уходе за ними после зараже-
ния или при вскрытии павших животных руководствуются соответствующими) пра-
вилами (см. п. 6.8), а при работе с эфиром, ледяной уксусной кислотой, концентри-
рованнои соляной кислотен, красками руководствуются правилами предосторож-
ности, изложенными в пунктам 3.14 и 8.8.

8.7. Отдел (экспедиция) по диагностике болезней рыб

8.7.1. При бактериологическом исследовании рыб необходимо придерживаться
тех же правил личной безопасности, которые установлены для работы в бактериоло-
гическом отделе (см. п. 8.1).
8.7.2. При паразитологическом исследовании вскрытие рыб (полное и неполное)
проводят на специально приспособленном лабораторном столе, который должен
иметь небольшой наклон к центру, где расположен водослив. Мелких рыб вскры-
вают в специально выделенных для этой цели кюветах.
8.7.3. По окончании вскрытия стол, кюветы и инструментарий тщательно про-
мывают водой и дезинфицируют 2%-ным раствором карболовой кислоты.
8.7.4. Исследованный патологический материал сжигают или автоклавируют.
8.7.5. По окончании работы рабочее место, спецодежду, инструментарий и дру-
гие предметы обеззараживают, а материал складывают в специальные баки и сдают
на стерилизацию в автоклаве.
8.7.6. В комнате для гидрохимических, химико-токсикологических и миколо-
гических исследований рыб должны быть вытяжной шкаф, настольный бокс, столы
для проведения исследований, шкафы для хранения химических реактивов и стек-
лопосуды.
8.7.7. Настольный бокс с бактерицидной лампой устанавливают стационарно
на одном из лабораторных столов.
8.7.8. Посевы на питательные среды из первичного материала и последующие
пересевы культур грибов проводят только в боксе.
8.7.9. культуры грибов, а также незафиксированные мазки из них и первич-
ного материала выносить из кабинета запрещается.

8.8. Химико-токсикологический и биохимический отделы

8.8.1. Работу с горючими и ядовитыми веществами проводят только в вытяж-
ном шкафу.
8.8.2. В помещениях отдела устанавливают общую вентиляцию, по там, где
проводят работу с особо вредными и ядовитыми веществами, вентиляционное уст-
ройство вытяжных шкафов от общей вентиляционной системы изолируют.
8.8.3. Для работы со взрывоопасными веществами берут их минимальные коли-
чества.
8.8.4. Не разрешается пользоваться открытым пламенем при наличии в поме-
щении легковоспламеняющихся веществ и при работе с ними.
8.8.5. Специалисты, работающие с особо опасными веществами (цианиды, трех-
хлористая сурьма, мышьяковистые соединения), обязаны пройти специальный
инструктаж.
8.8.6. Запрещается проводить химические исследования без спецодежды (ха-
лата, прорезиненного фартука и нарукавников, косынки или колпака, очков, рези-
новых перчаток).
8.8.7. Работать с летучими и ядовитыми веществами полагается в соответствую-
щих противогазах (масках) или респираторах.
8.8.8. Ядовитые и сильнодействующие средства списков А и Б (Ветеринарное
законодательство, т. 2. М., "Колос", 1972, с. 562-567, приложения 1 и 2), а также
ядовитые вещества, применяемые как реактивы, подлежат хранению в специально
выделенных для этой цели сейфах, металлических или обитых железом деревян-
ных шкафах или ящиках под замком.
8.8.9. Реактивы, содержащие ядовитые вещества (кроме титрованных раство-
ров), после окончания работы хранят в отдельных запирающихся на замок шка-
фах.
8.8.10. В шкафу реактивы распределяют по группам: неорганические - по
металлам (по аналитическим группам); органические - по классам углеводородов,
галоидопроизводные, спирты, кетоны, альдегиды и т. п. Препараты каждой группы
хранят в алфавитном порядке.
8.8.11. Твердые реактивы в виде порошков или кристаллов должны находиться
в стеклянных банках с притертыми пробками.
8.8.12. На склянки с реактивами наклеивают этикетки с названиями веществ.
8.8.13. При работе со ртутью соблюдают следующие меры безопасности:
а) нельзя хранить ртуть в тонкостенных сосудах;
б) при работе со ртутью следует избегать проливания ее. Перед тем как нали-
вать ртуть в другую посуду, необходимо принять меры, позволяющие быстро собрать
ее при случайном проливании;
в) удаление паров ртути из помещения достигается вентиляцией. При боль-
шом содержании паров ртути в помещении следует использовать сорбенты (активи-
рованный уголь, силикагель или перекись марганца) в сочетании с веществами,
химически связывающими ртуть,
г) если собрать ртуть механическим путем невозможно, рекомендуется при-
бегать к химическим способами большую часть ее перевести в окись, хлорид, суль-
фид, или другое нерастворимое и нелетучее соединение, пленка которого обволаки-
вает жидкую ртуть и предотвращает ее испарение;
д) демеркуризацию (обезвреживание ртути) в помещении проводят сероводоро-
дом (при этом на поверхности жидкой ртути образуется пленка сульфида ртути,
препятствующая испарению). Помещение при демеркуризации заполняют серово-
дородом в концентрации 0,5 мг/л, тщательно закрывают и оставляют на 40 часов.
Этот способ удобен для обезвреживания ртути на стенах и потолке;
е) чтобы избежать отравления ртутью и ее соединениями, следует работать
в перчатках и тщательно следить за чистотой спецодежды, которая должна быть
сшита из плотной хлопчатобумажной и льняной ткани. Для дегазации спецодежды
(от диэтилртути) ее пропаривают перегретым паром при 120-130 гр.С в течение 2 ча-
сов.